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LUCS 13 用于對活的和死的真核細胞以及革蘭氏陽性和革蘭氏陰性細菌中的 DNA 和 RNA 進行染色。染料被 488 nm 的藍色激光激發。其熒光發射在熒光素通道中檢測到，與 DNA 結合時峰值為 509 nm，與 RNA 結合時峰值為 514 nm。
該染料可用于同時標記細胞不可滲透的核標記物（例如 YoDi-3），以使用熒光顯微鏡和流式細胞術評估細胞活力。
確切的方案取決于具體的細胞類型和實驗任務。一般來說，可以描述如下：
準備 50 µM LUCS 13 儲備溶液。為此，將 990 µl 去離子水添加到 10 µl 5 mM LUCS 13 溶液中。儲備液可以等分并冷凍以供長期儲存。
要制備 1 µM LUCS 13 工作溶液，請將 20 µl 50 µM LUCS13 庫存添加到 980 µl PBS 中。
以合適的方式小心地從生長表面去除貼壁細胞。對于懸浮細胞，從下一點開始工作。
用冷 PBS（pH 7.4）清洗細胞一次。 300 g離心 5 分鐘獲得種子細胞 。
將細胞在 1 ml 1 μM LUCS 13 工作溶液中于 37°C 孵育 30 分鐘。
300 g離心 5 分鐘去除染料溶液 。
用 PBS 清洗細胞一次。
（可選）如有必要，可以將細胞在含 3.7% 甲醛的 PBS 中固定 15 分鐘，用 PBS 洗滌，然后用另一種染色劑重新染色。
處理 LUCS 13 溶液時請使用塑料瓶，因為稀釋的染料可能會粘在玻璃上。
使用無磷酸鹽緩沖液（例如鹽水中的 15 mM HEPES）可獲得更明亮的染色結果。
在開始實驗之前，測試幾種染料濃度范圍從 10 nM 到 5 µM，以確定最佳的染料稀釋度。染色結果受許多因素影響：生長培養基、細胞密度、其他細胞類型的存在、染色持續時間等。
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